探索免疫缺陷的发病机制Gata2基因

Gata2基因的突变与多种遗传性和获得性免疫疾病有关,Gata2缺乏综合征(G2DS)是一种罕见的常染色体显性遗传疾病,以髓系恶性肿瘤和免疫缺陷症状最为常见,发病年龄跨越人生命中的各个时期。

赛业生物《每周一鼠》,每周五更新,为大家讲解一个小鼠模型的故事,希望对大家了解不同的小鼠模型有所帮助。今天和大家见面的是Gata2基因敲除小鼠。

Gata2基因简介

该基因编码GATA锌指转录因子家族的成员,其基因编码的蛋白质在调节参与造血和内分泌细胞谱系发育和增殖的基因转录中起重要作用。该基因的突变与多种遗传性和获得性免疫疾病有关,包括骨髓增生异常综合征和急性髓性白血病。其相关途径有HDACII类和G-AlphaQ信号介导的信号通路。

图1Gata2基因相关信息

图2Gata2蛋白结构

Gata2相关疾病介绍

Gata2基因参加调节树突状细胞的分化、造血干细胞的增殖、IgE/肥大细胞的分化、粒细胞-单核细胞祖细胞的分化等多种细胞的分化与增值,该基因的突变会引发免疫缺陷。免疫缺陷是一种由于机体免疫系统发育缺陷或免疫反应障碍导致机体抗感染能力下降的疾病,临床表现为感染、恶性肿瘤、自身免疫病等,严重影响机体的健康。

该病的发病原因多种,其中先天性(原发性)免疫缺陷病的有B细胞缺陷性疾病、T细胞缺陷性疾病、T和B细胞联合缺陷性疾病及吞噬细胞缺陷病等,后天继发性免疫缺陷病有感染、恶性肿瘤、蛋白丧失等,医源性免疫缺陷的诱因有长期使用免疫抑制剂、抗生素、放射性损伤等。此病的治疗较为复杂,治疗方法有:应用免疫抑制剂(IgG、特异性免疫血清、细胞因子等)、免疫重建(胸腺移植、骨髓移植、造血干细胞移植等)、基因治疗等[1~3]。

Gata2基因敲除小鼠

Charles[4]等研究人员在Gata2基因5号外显子两侧插入loxp位点,产生Gata2flox/flox小鼠(图3)。

图3Gata2flox/flox小鼠构建方式[4]

Onodera[1]等人将Gata2flox/flox与ER-Cre小鼠杂交,产生树突状细胞(DC)特异性Gata2敲除小鼠(Gata2flox/flox/ER-Cre)。研究结果表明,杂交后代DC中几乎检测不到Gata2mRNA表达,脾脏中浆细胞样DC、常规DC以及总DC百分比下降,脾脏组织中CD11c+细胞含量极少,此外,Gata2敲除小鼠的祖细胞数量也显著降低(图4)。由此可知,Gata2对调节DC分化具有重要意义,在免疫调节方面发挥重要作用。

图4Gata2flox/flox小鼠免疫缺陷表型[1]

图注:A:Gata2敲除小鼠PCR分析。B:Gata2flox/flox/ER-Cre小鼠骨髓细胞中Gata2mRNA检测。C:流式细胞术检测Gata2flox/flox/ER-Cre小鼠脾细胞中脾细胞群(pDCs(浆细胞样树突状细胞)、cDCs(常规树突状细胞))的百分比。D:脾脏的免疫组化分析。切片用抗CD11c的抗体染色(CD11c+细胞为棕色)。比例尺,50μm。E:流式细胞术分析骨髓祖细胞百分比。

Li[5]等人将Gata2flox/flox与Mcpt5-Cre小鼠杂交产生结缔组织肥大细胞特异性Gata2缺陷小鼠(Gata2f/f/Mcpt5-Cre)。研究发现,Gata2f/f/Mcpt5-Cre小鼠耳部皮肤、胃、气管、腹腔中肥大细胞缺失,但存在相当数量的碱性粒细胞、T细胞、B细胞、树突状细胞、自然杀伤性细胞、中性粒细胞以及巨噬细胞。Gata2f/f/Mcpt5-Cre小鼠没有PCA(被动皮肤过敏反应)和PSA(被动全身性过敏反应),并且在抗原攻击后5min没有释放组胺,其肥大细胞蛋白酶1(MMCP-1)的分泌也显著低于WT小鼠。结果表明,Gata2对过敏反应意义重大(图5)。

图5Gata2flox/flox小鼠免疫缺陷表型[5]

图注:A:腹腔肥大细胞(MC)和骨髓嗜碱性粒细胞(Ba)的流动分析。B:肥大细胞的甲苯胺蓝染色。肥大细胞用箭头表示。C:被动皮肤过敏反应分析(用IgE抗2、4、6-三硝基苯(TNP)抗体致敏,并通过静脉注射TNP-BSA(μg/μlPBS)和0.5%伊文思蓝染料。注射后30分钟,收集耳朵并在二甲基甲酰胺中培养48小时,然后测量二甲基甲酰胺在nm(ODnm)处的吸光度。)D:被动全身过敏反应(PSA)分析(用10μgIgE抗TNP抗体致敏,并用10μgTNP-BSA攻击。在攻击前(0分钟)和攻击后5、10、15、20、25、30、40、60、80、和分钟测量受攻击小鼠的直肠温度。)E:ElISA分析组胺含量。F:ElISA分析MMCP-1含量。G:小鼠骨髓衍生肥大细胞的PSA分析。

参考文献:

[1]OnoderaK,FujiwaraT,OnishiY,Itoh-NakadaiA,OkitsuY,FukuharaN,IshizawaK,ShimizuR,YamamotoM,HarigaeH.GATA2regulatesdendriticcelldifferentiation.Blood.Jul28;(4):-18.doi:10./blood--02-.EpubJun3.PMID:;PMCID:PMC.

[2]LiHS,JinJ,LiangX,MatatallKA,MaY,ZhangH,UllrichSE,KingKY,SunSC,WatowichSS.Lossofc-KitandbonemarrowfailureuponconditionalremovaloftheGATA-2C-terminalzincfingerdomaininadultmice.EurJHaematol.Sep;97(3):-70.doi:10./ejh..EpubJan14.PMID:;PMCID:PMC.

[3]DudeckA,DudeckJ,ScholtenJ,PetzoldA,SurianarayananS,KhlerA,PeschkeK,VhringerD,WaskowC,KriegT,MüllerW,WaismanA,HartmannK,GunzerM,RoersA.Mastcellsarekeypromotersofcontactallergythatmediatetheadjuvanteffectsofhaptens.Immunity.Jun24;34(6):-84.doi:10./j.immuni..03..PMID:.

[4]CharlesMA,SaundersTL,WoodWM,OwensK,ParlowAF,CamperSA,RidgwayEC,GordonDF.Pituitary-specificGata2knockout:effectsongonadotropeandthyrotropefunction.MolEndocrinol.Jun;20(6):-77.doi:10./me.-.EpubMar16.PMID:.

[5]LiY,LiuB,HarmacekL,LongZ,LiangJ,LukinK,LeachSM,OConnorB,GerberAN,HagmanJ,RoersA,FinkelmanFD,HuangH.ThetranscriptionfactorsGATA2andmicrophthalmia-associatedtranscriptionfactorregulateHdcgeneexpressioninmastcellsandarerequiredforIgE/mastcell-mediatedanaphylaxis.JAllergyClinImmunol.Oct;(4):-.doi:10./j.jaci..10..EpubDec24.PMID:;PMCID:PMC.




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